提供一種星型膠質細胞的純化培養方法：

　　1. 分離大鼠胚胎（16-18周）新皮層，置于L-15（或Hank‘s平衡鹽/DMEM溶液，無Hepes）培養基中，除去腦膜和血管、海馬、尾核和其他非皮層組織。

　　2. 用解剖刀將其切成1mm3大小的組織塊。

　　3. 用1ml槍頭轉移250μl膠原酶儲存液（1.33%，溶于L-15中）到1ml的L-15（或D-MEM）中。每2只鼠腦組織塊使用1-1.5ml稀釋膠原酶液。

　　4. 37℃水浴中孵育30min.

　　5. 1000rpm（大約230g）中離心5min，或3000rpm（大約2000g）中離心1min.

　　6. 去上清。

　　7. 在含EDTA-CMF的溶液中重懸細胞，并與胰蛋白酶以1：4～1：10比例混合。可以根據觀察到的細胞消化的情況，適當調整兩者的比例。

　　8. 加入胰蛋白酶的抑制劑和DNase溶液，混合5分鐘。

　　9. 1000rpm（大約230g）中離心5min，或3000rpm（大約2000g）中離心1min.

　　10.去上清。加入500μl D-MEM-BS.

　　11.輕輕吹打成單細胞懸液，開始用5ml槍頭吹打10次，在需要時用18-gauge的針頭吹打。（ 注意：不要產生氣泡。）200目/300目尼龍網過濾。

　　12.將細胞轉移到含10%FCS-DMEM的培養瓶中，培養密度為2X106/25cm2培養瓶，4～6 X106/75cm3培養瓶。在37.2℃，37.5%中培養。

　　13.第2天換液，以后每隔3天換液。

　　14.7-10天，細胞發生融合。

　　15.細胞融合后，將瓶蓋用封口膜密封好，在軌跡搖床上培養，旋轉速度以不產生氣泡為宜。37℃振搖過夜。細胞注意避光。

　　16.去上清，加入新鮮10%FCS-DMEM.

　　17.加入200μl 1mM的阿糖胞苷/10ml培養基。在37.2℃，37.5%中培養孵育48小時以消除分裂的細胞。

　　18.換用新鮮10%FCS-DMEM，孵育恢復24小時。

　　19.重復17-18步驟，消除所有的分裂細胞。